想攻克ELISA實(shí)驗(yàn)？你清楚這些嗎？

ELISA是蛋白定量的金標(biāo)準(zhǔn)，也是免疫學(xué)研究中常用的實(shí)驗(yàn)方法之一。很多人覺得ELISA很簡單，其實(shí)不然。帶你繞開ELISA實(shí)驗(yàn)中出現(xiàn)的各種問題，輕松搞定ELISA實(shí)驗(yàn)~

酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)

1971年瑞典學(xué)者Engvail和Perlmann,荷蘭學(xué)者VanWeerman和Schuurs分別報(bào)道將免疫技術(shù)發(fā)展為檢測體液中微量物質(zhì)的固相免疫測定方法，即酶聯(lián)免疫吸附測定法(Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay, ELISA)。

酶聯(lián)免疫吸附（ELISA）用于：

（1）免疫酶染色各種細(xì)胞內(nèi)成份的定位；

（2）研究抗酶抗體的合成；

（3）顯現(xiàn)微量的免疫沉淀反應(yīng)；

（4）定量檢測體液中抗原或抗體成份。

?優(yōu)點(diǎn)：快速、靈敏、定性、定量、定位

常用方法

1.間接法
檢測抗體常用的方法, 主要用于對病原體抗體的檢測。

優(yōu)勢：二抗可以加強(qiáng)信號，而且有多種選擇能做不同的測定分析。不加酶標(biāo)記的一級抗體則能保留它多的免疫反應(yīng)性。

缺點(diǎn)：交互反應(yīng)發(fā)生的機(jī)率較高

2.雙抗體夾心法

檢測大分子抗原常用的方法。

優(yōu)勢：高靈敏、高專一性，抗原無須事先純化。

缺點(diǎn)：抗原一定得擁有兩個(gè)以上的抗體結(jié)合部位。

3.競爭法

檢測小分子半抗原（藥物、激素等）。

優(yōu)勢：可適用比較不純的樣本，而且數(shù)據(jù)再現(xiàn)性很高。

缺點(diǎn)：整體的敏感性和專一性都較差。

常見問題分析

1.標(biāo)曲不顯色或顯色很弱，樣本顯色

溶解標(biāo)準(zhǔn)品以及倍比稀釋時(shí)，未渦旋震蕩或不夠充分。

標(biāo)準(zhǔn)品溶解、倍比稀釋時(shí)均需要渦旋震蕩以保證充分混勻。單純依靠移液器反復(fù)吹打，效率較低、效果也不一定jia。

2.標(biāo)曲和樣本均不顯色

在孵育階段靜置在桌面上，這樣非常不利于抗原抗體之間的充分接觸，導(dǎo)致顯色偏弱。

推薦孵育階段，使用ELISA的微孔板振蕩器，調(diào)至合適的頻率，使抗原抗體充分接觸，保證結(jié)合效果。如果排除上述原因，有可能是漏加了某個(gè)組分，如檢測抗體、酶等。對于比較馬虎的新手，一定要做好標(biāo)記和記錄，或者使用添加染料的ELISA試劑盒。

3.標(biāo)曲顯色，樣本不顯色

當(dāng)樣本中目的蛋白濃度極低或者樣本中干擾因素較強(qiáng)，就無法檢測到。目前ELISA仍然是蛋白檢測靈敏度gao的方法，與不同技術(shù)結(jié)合后，衍生出了多種類型的ELISA，提高了檢測靈敏度。

對于目的蛋白濃度特別低的樣本，可以嘗試用高敏ELISA，但這也并不意味著一定能檢測到樣本濃度，只能說可以提高樣本的可測率，并使結(jié)果更加可靠。因?yàn)橥ǔＳ闷胀‥LISA檢測的樣本OD值都偏低，而高敏ELISA可提高樣本OD值，使之盡量位于標(biāo)曲范圍內(nèi)，得到的數(shù)值也更加可信。

4.標(biāo)曲和樣本都顯色，但復(fù)孔的CV大

這個(gè)問題就跟移液器和實(shí)驗(yàn)者的操作有關(guān)了。移液器的使用維護(hù)不規(guī)范，就會造成移液的誤差較大；實(shí)驗(yàn)者自身的操作習(xí)慣、加樣的一致性對復(fù)孔的CV也有很大影響。

掌握移液器的正確使用和維護(hù)。關(guān)于個(gè)人的操作可練習(xí)移液動作、加快速度，確保移液的精密度。

5.本底偏高，樣本值測不到

標(biāo)曲的本底即Blank孔的OD值一般要求控制在0.1以下(對于高敏ELISA可以適當(dāng)放寬要求)。尤其是樣本值特別低的時(shí)候，本底過高會掩蓋目的信號，導(dǎo)致無法測到樣本值。

在加入TMB顯色后，需實(shí)時(shí)觀察標(biāo)曲顯se情況。通常在S5孔有肉眼可見的微弱藍(lán)色，即可終止反應(yīng)。

6.樣本經(jīng)不同梯度稀釋，計(jì)算得到的樣本值差異較大

有時(shí)候我們不清楚樣本中目的蛋白的濃度如何，應(yīng)該如何稀釋，那么我們就會做下預(yù)實(shí)驗(yàn)，確定稀釋倍數(shù)。然而有時(shí)候同一樣本做了幾個(gè)不同梯度稀釋后，計(jì)算得到的樣本值之間差異較大，應(yīng)該選擇哪一個(gè)稀釋倍數(shù)呢？

這里涉及到了基質(zhì)效應(yīng)。通常血清樣本加樣量較高時(shí)，血清中的各種蛋白會抑制抗原抗體的接觸，基質(zhì)效應(yīng)較明顯。而經(jīng)過稀釋后，干擾因素也隨之稀釋，影響就會較小。當(dāng)某兩個(gè)梯度稀釋后，計(jì)算得到的樣本值接近時(shí)，我們就可以認(rèn)為在該稀釋梯度時(shí)，樣本中的干擾因素影響較小，計(jì)算得到的值也是接近真實(shí)的。然而這樣的稀釋是針對目的蛋白濃度較高的樣本而言。對于濃度很低的樣本，經(jīng)過多倍稀釋后，就更加測不到了，此時(shí)可按照廠家說明書推薦的加樣方式操作。

7.不同試劑盒中的組分能否通用

除非是公用的試劑如洗液、檢測緩沖液，其它組分不建議用其它試劑盒的組分，甚至是同一指標(biāo)不同批次的試劑盒里的組分。這些組分(包括標(biāo)準(zhǔn)品、標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液、檢測抗體、酶等)都是經(jīng)過優(yōu)化的，如果貿(mào)然使用其它試劑盒的組分，有可能對結(jié)果產(chǎn)生影響。