1.TSZelisa試劑盒包被抗原的選擇 
包被抗原可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類。天然蛋白需經(jīng)純化才能用直接吸附法包被，對(duì)于含雜質(zhì)較多的抗原可以采 用間接捕獲法包被（先用能夠與目的抗原反應(yīng)的物質(zhì)如抗體直接吸附在酶標(biāo)板上，再通過特異性反應(yīng)使抗原固相化）。經(jīng)純化的重組蛋白一般皆可直接包板。小分子 抗原比如多肽以及一些小分子有機(jī)化合物，由于分子量太小，往往難于直接吸附在酶標(biāo)板上，一般都先使其與無關(guān)蛋白質(zhì)如BSA等偶聯(lián)，偶聯(lián)物吸附于固相載體上。  
2.包被液的選擇 
一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液，如果包被的抗原在堿性條件下不穩(wěn)定的話，TSZelisa試劑盒也可以使用pH7.2的磷酸 鹽緩沖液。 
3.包被溫度的選擇 
通常是4-8度條件下過夜或者37度保溫2小時(shí)，建議4-8度條件下包被，有利于蛋白活性的保持。  
4.包被濃度的選擇 
包被的適濃度隨固相載體和包被物的性質(zhì)變化，一般蛋白質(zhì)的包被濃度為1-5ug/ml，要明確針對(duì)特定包 被抗原的適包被濃度需要通過實(shí)驗(yàn)來確定。  
包板后需要封閉嗎？應(yīng)該選擇什么樣的封閉體系？  
封閉是否必要，取決于TSZelisa試劑盒的模式及具體的實(shí)驗(yàn)條件。一般說來，雙抗體夾心法，只要酶標(biāo)記物是高活性的，操作時(shí)洗滌*，不經(jīng)封閉也可得到滿意的結(jié)果。而在間接法測定中，封閉一般是*的。